Die stabile Isotopenanalyse ist eine etablierte Technik und wird häufig in wissenschaftlichen Bereichen wie der Geologie, Meteorologie, Archäologie, Lebensmittelechtheit und Ökologie benutzt. Unterschiedliche Instrumente wurden dazu entwickelt und obwohl die Messung von stabilen Isotopenverhältnissen mittels LC-IRMS nicht die am weitesten verbreitete Methode ist, so hat sie dennoch wesentliche Vorteile gegenüber anderen, verbreiteteren Instrumenten und wird häufig für die δ13C Analyse von Kohlenhydraten, Aminosäuren und umweltrelevanten Komponenten benutzt. Dies wird durch die komponentenspezifische Isotopenanalyse von individuellen Aminosäuren in einem kontrollierten Fütterungs- und Infektionsexperiment mit einer parasitären Zestode (Schistocephalus solidus), ihrem zweiten vorrübergehenden Wirt (drei-stachliger Stichling, Gasterosteus aculeatus) und proteinreicher Fischnahrung demonstriert, um unser Verständnis der trophischen Isotopenfraktionierung und dem Nährstofftransfer zu verbessern. Das System war in der Lage, die stabile Isotopensignatur von Kohlenstoff von insgesamt dreizehn Aminosäuren mit geringer Probenvorbereitung und über einen umfangreichen Probenzeitraum genau zu bestimmen. Obwohl die trophische Fraktionierung der Aminosäuren im Stichling aufgrund von Isotopenrouting bei Nahrung mit hohem Proteinanteil sehr gering ausfiel, war es möglich unterschiedliche zeitliche Trends in den δ13C-Werten in Leber- und Muskelgewebe zu sehen, welche durch geringe Unterschiede der Kohlenstoffisotopensignatur in der Fischnahrung induziert wurden. Die Biosynthese von nicht essenziellen Aminosäuren in der Leber wurde von sehr kleinen Mengen an Lipiden in der Nahrung angedeutet und hebt die Stärke dieser Technik in Kombination mit einer multivariaten Datenanalyse hervor. Ein ähnlicher Ansatz wurde genutzt, um höhere Δδ13C Werte von infizierten im Vergleich zu nicht infizierten Stichlingen auf derselben Diät zu zeigen, was auf eine höhere Belastung des Stoffwechsels von Wirten durch die Infektion mit Parasiten deutet und sich in der Kohlenstoffisotopensignatur der Aminosäuren durch umfangreichen Abbau widerspiegelt, womöglich um eine anhaltende Immunreaktion und das Wachstum des Parasiten zu gewährleisten. Die komponentenspezifische Isotopenanalyse wurde bereits als nützliches Werkzeug zur Untersuchung der Interaktionen zwischen Wirt und Parasit hervorgehoben, und präzise Messungen der Kohlenstoffisotopensignaturen von geringen Mengen an Probenmaterialien ermöglichten es, die Nährstoffquelle des Parasiten S. solidus innerhalb des Wirtes zu bestimmen. Diese deutete auf die Assimilation von Ressourcen aus dem Lebergewebe des Wirtes oder deren Metabolite hin, und der Parasit ist folglich in der Lage große Mengen an Glykogen anzureichern, welches er für das Heranwachsen benötigt. Die Kohlenstoffisotopensignatur der Glukose konnte zusätzlich mit einer einfachen Probenvorbereitung und chromatografischen Trennung gemessen werden. Glukose im Parasiten könnte in großen Mengen durch Biosynthese aus Alanin, Asparagin und Glutamin produziert werden, da die Kohlenstoffisotopensignatur der Glukose zu diesen Aminosäuren über die Zeit sehr konstant zu -2 bis -3 ‰ niedriger war, was der Idee von enzymatischen Reaktionen entspricht, die häufig gegenüber den schwereren Isotopen diskriminieren. Zusätzlich wurde eine mögliche Umwandlung von Threonin and Serin zu Glycin durch Isotopenfraktionierung sichtbar, was insgesamt zu weiteren Studien mit isotopisch angereicherten Materialien anregt, um mehr detaillierte Informationen zu erhalten und eine Quantifizierung des Nährstofftransfers zwischen Wirt and Parasit zu ermöglichen. Um das Feld der LC-IRMS zu erweitern, wurde ein modifiziertes Interface zur Analyse von δ15N Werten aus Nitrat entwickelt und in einer ersten Proof-of-Principle Studie getestet. Die Reduzierung von Nitrat zu messbarem N2 wurde mit V(III)Cl3 und elementarem Kupfer anhand etablierter Techniken verwirklicht, wobei bereits veröffentlichte Verbesserungen für die LC-IRMS zusätzlich implementiert wurden, um die Präzision und Langlebigkeit der Ionenquelle zu erhöhen. Es war möglich die δ15N Werte aus 10 µL Injektionen von 50 mgL-1 N Nitratstandards und Referenzmaterialien mit einer Präzision besser als 1.4 ‰ zu bestimmen, wobei die Linearität zwischen den δ15N Werten ausreichend gegeben war, um Messungen mit natürlichen Isotopenverhältnissen zu ermöglichen. Die größten auftretenden Probleme waren hohe Hintergrundwerte an Stickstoff aus der mobilen Phase und nicht-lineare Signalstärken von Standards mit unterschiedlichen Konzentrationen an Nitrat. Trotzdem war es bereits möglich diese neue Technik auf Proben von einem Anreicherungsexperiment anzuwenden, wo 15Nangereichertes Ammoniumchlorid in einen Fluss eingebracht wurde, um die Umgebung durch natürliche Nitrifizierungsprozesse isotopisch zu markieren. Entgegen unserer Erwartung konnte allerdings innerhalb der ersten zwei Wochen kein Anstieg der δ15N Werte von Nitrat in Wasserproben flussabwärts gemessen werden. Zugleich waren die δ15N Werte von unbekannten Stickstoffspezies, die früh im Chromatogramm mit dem Injektionspeak eluierten, stark an 15N angereichert. Dies könnte möglicherweise auf angereichtes Nitrit zurückzuführen sein, wobei Messfehler aufgrund des frühen Entwicklungsstadiums des Interfaces nicht ausschließbar sind. Weitere Experimente und Entwicklungen sind demnach notwendig, wobei das System schon jetzt vielversprechende Ergebnisse liefert und eine schnelle und zuverlässige Isotopenanalyse von Nitrat zur Bestimmung von anthropogenen Quellen ermöglichen kann. Zusätzlich sind weitere Anwendungsmöglichkeiten wie die δ15N Analyse von organischen Substanzen in Zukunft denkbar, was den Anwendungsbereich der LC-IRMS stark erweitern würde.