Inhalt
Titel
Danksagung
Inhaltsverzeichnis
Abbildungsverzeichnis
Tabellenverzeichnis
1 | Einleitung | 1 |
2 | Stand der Forschung | 4 |
2.1 | Nickelspezies in biologischen Proben | 4 |
2.2 | Induktiv-gekoppltes-Plasma / Massenspektrometrie (ICP-MS) | 9 |
3 | Problemstellung | 20 |
4 | Analysenverfahren | 21 |
4.1 | Probenmaterial | 21 |
4.2 | Probenvorbereitung | 23 |
4.3 | Eingesetzte Kopplungstechniken | 24 |
4.4 | Totalreflexionsröntgenfluoreszensanalyse (TXRF) | 31 |
4.5 | Gesamtproteinbestimmung nach Biuret-Lowry | 31 |
5 | Optimierung der Analysenmethoden | 32 |
5.1 | Reduzierung von Nickelkontaminationen | 32 |
5.2 | Optimierung der CE-Trennbedingungen mithilfe eines gemischten Metallothionein-Standards | 36 |
5.3 | Vergleich unterschiedlicher Cytosolherstellungsverfahren | 45 |
5.4 | Optimierung der Probenvorbehandlung | 46 |
5.5 | Trennbedingungen der SEC-Trennung | 51 |
6 | Nickelspeziesanalyse im Cytosol kolorektaler Humangewebeproben | 54 |
6.1 | Bestimmung der Gesamtnickelgehalte im Cytosol mithilfe der TXRF | 54 |
6.2 | Gesamtproteinbestimmung der Cytosole der Proben 1-5 | 57 |
6.3 | Nickelspeziesanalyse mithilfe der CE / ICP-MS Kopplung | 58 |
6.4 | Nickelspeziesanalyse mithilfe der SEC / ICP-MS Kopplung | 67 |
6.5 | Verdrängungsreaktionen der Ni2+- durch Zn2+-Ionen | 79 |
7 | Zusammenfassung | 82 |
8 | Ausblick | 86 |
9 | Literaturverzeichnis | 88 |
10 | Anhang | 101 |
10.1 | Geräteliste | 101 |
10.2 | Verwendete Chemikalien | 102 |
10.3 | Verwendete Abkürzungen | 103 |
10.4 | Experimetelles | 105 |
10.5 | Optimierung | 106 |
10.6 | Optimierung der Cytosolherstellung | 108 |
10.7 | TXRF Messungen | 109 |
10.8 | Gesamtproteinbestimmung | 111 |
10.9 | Berechnung statistischer Größen für die CE / ICP-MS Kopplung | 112 |
10.10 | Nickelspeziesanalyse mithilfe der CE / ICP-MS (Probe 1-2 und 10-15) | 113 |
10.11 | Berechnung statistischer Größen für die SEC / ICP-MS Kopplung | 128 |
10.12 | Nickelspeziesanalyse mit Hilfe der SEC / ICP-MS Kopplung | 129 |